فصلنامه علمی زیست فناوری گیاهان زراعی

با همکاری مشترک دانشگاه پیام نور و انجمن بیوتکنولوژی جمهوری اسلامی ایران

شماره جاری

بر اساس شماره‌های نشریه

بر اساس نویسندگان

بر اساس موضوعات

نمایه نویسندگان

نمایه کلیدواژه ها

درباره نشریه

اهداف و چشم انداز

اعضای هیات تحریریه

اصول اخلاقی انتشار مقاله

بانک ها و نمایه نامه ها

پیوندهای مفید

پرسش‌های متداول

فرایند پذیرش مقالات

اطلاعات آماری نشریه

اخبار و اعلانات

ازدیاد درون شیشه ای واریته city of leads رز (Rosa hybrid Cv. City of leads) از طریق کشت جوانه جانبی

نوع مقاله : علمی پژوهشی

نویسندگان

محقق

چکیده

یک روش تکثیر درون شیشه‌ای کارآمد به منظور تکثیر گونه rosa hybrid واریته city of leads از طریق تکثیر جوانه جانبی بررسی گردید. در ابتدا ریزنمونه‌ها به منظور استقرار بر روی دو محیط کشت MS و van der salm در ترکیب با غلظت‌های مختلف هورمون‌های BA و NAA کشت گردیدند. بیشترین درصد استقرار ریزنمونه‌ها (100 درصد) و تعداد نوساقه‌ها (4/3 نوساقه در هر ریزنمونه) در محیط van der salm حاوی 2 میلی‌گرم در لیتر BA همراه با 05/0 میلی‌گرم در لیتر NAA بدست آمد. در مرحله بعدی به منظور بهبود سرعت تکثیر، نوساقه‌ها بر روی محیط کشت van der salm حاوی غلظت‌های 0، 5/0، 25/1، 5/1 و 75/1 میلی‌گرم در لیتر BA به تنهایی و یا در ترکیب با 0، 03/0، 06/0 و 09/0 میلی‌گرم در لیتر NAA کشت گردیدند. بیشترین تعداد نوساقه‌ها (6/9 نوساقه در هر ریزنمونه) بر روی محیط حاوی 75/1 میلی‌گرم در لیترBA همراه با 03/0 میلی‌گرم در لیتر NAA تولید شد. رشد طولی نوساقه‌ها بر روی محیط van der salm حاوی 0، 10/0، 05/0 و 01/0 میلی‌گرم در لیتر BA به تنهایی و یا همراه با ، 03/0، 06/0 و 09/0 میلی‌گرم در لیتر NAA بررسی شد. بهترین تیمار جهت رشد طولی نوساقه‌ها تیمار حاوی 01/0 میلی‌گرم در لیتر BA در ترکیب با 09/0 میلی‌گرم در لیتر NAA بود. نوساقه‌ها به منظور ریشه‌زایی به محیط‌های ریشه‌زایی حاوی هورمون‌های IBA و NAA انتقال یافتند. بیشترین درصد ریشه‌زایی (0/93 درصد) در تیمار هورمونی حاوی 05/0 میلی‌گرم در لیتر NAA بدست آمد،

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

A rapid in vitro micropropagation protocol from nodal segments of Rosa hybrid Cv. City of leads

نویسندگان [English]

  • A Saidi
  • N Irvani
  • A.R Zare

چکیده [English]

An efficient in vitro propagation protocol of Rosa hybrid Cv. City of leads by axillary shoot proliferation from nodal segments of mature plants was developed. Explants were cultured on two medium formulations, namely Murashige and Skoog (MS) and Van der salm supplemented with various concentrations of N6- benzyladenine (BA) and α-naphthalene acetic acid (NAA). The best explant establishment (100%) and shoot number (3.4 axillary shoots/ explant) was achieved in Van der salm medium supplemented with 2 mg l-1 BA and 0.05 mg l-1 NAA. The following step was to improve the clonal propagation of this cultivar. Multiple shoots were induced from shoot tips cultured on agar based Vander salm medium containing BA (0, 0.5, 1.25, 1.5 and 1.75 mg l-1) alone or in combination with NAA (0, 0.03, 0.06 and 0.09 mg l-1). The highest number (9.6 shoot per explants) of proliferated shoots was obtained with 1.75 mg l-1 BA plus 0.03 mg l-1 NAA. Elongation of the induced shoots was achieved on Van der salm basal medium containing 0, 0.01, 0.05 and 0.1 mg l-1 BA alone or in combination with 0, 0.03, 0.06 and 0.09 mg l-1 NAA. The best treatment for shoot elongation was obtained with 0.01 mg l-1 BA plus 0.09 mg l-1 NAA. Elongated shoots were excised and transferred into rooting medium containing auxins NAA or IBA. The highest percentage (93.0 %) of root induction was obtained on Van der salm medium supplemented with 0.05 mg l-1 NAA.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Micropropagation
  • Van der Salm medium
  • Rosa hybrid Cv. City of leads
مراجع
 
 
Carelli BP, Echeverrigaray S (2002) An improved system for the in vitropropagation of rose cultivars. ScientiaHorticulturae. 92: 69–74.
Hasegawa PM (1979) In vitro propagation of rose. Horticulture Science. 14: 610–612.
Horn WAH (1992) Micropropagation of rose (Rosa L.). In: Bajaj YPS (ed) Biotechnology in agriculture and forestry, vol 20, High-tech and micropropagation IV. Springer, Germany, pp 320–342.
Hsia C, Korban SS(1996) Organogenesis and somatic embryogenesis incallus cultures of Rosa hybrida and Rosa chinensis minima. PlantCell Tissue and Organ Culture.44: 1– 6.
Ibrahim R, Debergh PC (2001) Factors controlling highefficiency adventitious bud formation and plantregeneration from in vitro leaf explants of roses (Rosahydrida L.). ScientiaHorticulturae. 88: 41–57.
Jain SM, Ochatt SJ (2010) Protocols for In Vitro Propagation of Ornamental Plants, Methods in Molecular Biology. Humana Press, INC, USA.
Kavand S, Kermani MJ, Haghnazari A, Khosravi P, Azimi MR (2011) Micropropagation and medium-term conservation of Rosa Pulverulenta. ActaScientiarum. Agronomy. 33(2): 297-301.
Kim KC, Chung JD, Jee SO, Oh JY (2003b) Somatic embryogenesis from in vitro grown leaf explants of Rosa hydrida L. Journal of Plant Biotechnology. 5: 161–164.
Kim KC, Oh JY, Jee SO, Chung JD (2003a) In vitromicropropagation of Rosa hybrida L. Journal of Plant Biotechnology. 5: 115–119
Khosh-Khui M, Sink KC (1982) Rooting enhancement of Rosa hybrida for tissue culture propagation. Scientia Horticulturae.17: 371– 376.
KhosraviP, JafarkhaniKermani M, Nematzadeh GA, Bihamta MR (2007) A protocol for mass production of Rosa hybrida cv. Iceberg through in vitro propagation. Iranian Journal of Biotechnology. 5 (2): 100- 104.
MA Y, Byrne DH, Chen J (1996) Propagation of rose species in vitro.In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 32:103-108.
Marcelis van Acker CAM, Scholten HJ (1995) Development of axillary budsof rose in vitro. Scientia Horticulturae. 63: 47– 55.
Noriega C, Sondahl MR (1991) Somatic embryogenesis in hybrid tea roses. Biotechnology. 9: 991–993.
Pati PK, Rath SP, Sharma M, Sood A, Ahuja PS (2006) In vitro propagation of rose-a review. Biotechnology Advances.24: 94– 114.
Singh SK, Syamal MM (1999) Critical studies on the effect of growth regulators on in vivo shoot proliferation in Rosa hybrida L. cv Sonia for micropropagation. J ApplHorticLucknow. 1: 91– 93.
Skirvin RM, Chu MC, (1979) In vitro propagation of ‘Forever Yours’ rose.Horticulture Science. 14: 608–610.
Van der Salm TPM, van der Toorn CJG, Hanisch ten Cate CH, Dubois LAM, De Vries DP, Dons HJM (1994) Importance of the iron chelate formula for micropropagation of Rosa hybrida L dMoneywayT. Plant Cell Tissue and Organ Culture.37:73-77.
VuNH, Anh PH, Nhut DT (2006) The role of sucrose and different cytokinins in the in vitro floral morphogenesis of rose (hybrid tea) cv. ‘‘First Prize’’. Plant Cell Tissue and Organ Culture. 87: 315-320.
Wang GY, Yuan MF, Hong Y (2002) In vitro flower induction in roses.In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 38: 513-518.
 
 
 
فصلنامه علمی زیست فناوری گیاهان زراعی
دوره 2، شماره 2 - شماره پیاپی 2
شهریور 1391
صفحه 87-95
فایل ها
هم رسانی
ارجاع به این مقاله
آمار