• صفحه اصلی
  • مرور
    • شماره جاری
    • بر اساس شماره‌های نشریه
    • بر اساس نویسندگان
    • بر اساس موضوعات
    • نمایه نویسندگان
    • نمایه کلیدواژه ها
  • اطلاعات نشریه
    • درباره نشریه
    • اهداف و چشم انداز
    • اعضای هیات تحریریه
    • همکاران دفتر نشریه
    • اصول اخلاقی انتشار مقاله
    • بانک ها و نمایه نامه ها
    • پیوندهای مفید
    • پرسش‌های متداول
    • فرایند پذیرش مقالات
    • اخبار و اعلانات
  • راهنمای نویسندگان
  • ارسال مقاله
  • داوران
  • تماس با ما
 
  • ورود به سامانه ▼
    • ورود به سامانه
    • ثبت نام در سامانه
  • English
صفحه اصلی فهرست مقالات مشخصات مقاله
  • ذخیره رکوردها
  • |
  • نسخه قابل چاپ
  • |
  • توصیه به دوستان
  • |
  • ارجاع به این مقاله ارجاع به مقاله
    RIS EndNote BibTeX APA MLA Harvard Vancouver
  • |
  • اشتراک گذاری اشتراک گذاری
    CiteULike Mendeley Facebook Google LinkedIn Twitter Telegram
فصلنامه علمی ـ پژوهشی زیست فناوری گیاهان زراعی
مقالات آماده انتشار
شماره جاری
شماره‌های پیشین نشریه
دوره دوره 9 (1398)
دوره دوره 8 (1397)
دوره دوره 7 (1396)
دوره دوره 6 (1395)
دوره دوره 5 (1394)
شماره شماره 12
شماره شماره 11
شماره شماره 10
شماره شماره 9
دوره دوره 4 (1393)
دوره دوره 3 (1392)
دوره دوره 2 (1391)
دوره دوره 1 (1390)
احمدی, بهزاد, اصغری ذکریا, رسول, عنایتی شریعت پناهی, مهران, زارع, ناصر, آزادی, پژمان. (1394). القای تقسیمات اسپوروفیتی و تشکیل ساختارهای رویانی در کشت میکروسپور گوجه فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.). فصلنامه علمی ـ پژوهشی زیست فناوری گیاهان زراعی, 5(10), 17-29.
بهزاد احمدی; رسول اصغری ذکریا; مهران عنایتی شریعت پناهی; ناصر زارع; پژمان آزادی. "القای تقسیمات اسپوروفیتی و تشکیل ساختارهای رویانی در کشت میکروسپور گوجه فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.)". فصلنامه علمی ـ پژوهشی زیست فناوری گیاهان زراعی, 5, 10, 1394, 17-29.
احمدی, بهزاد, اصغری ذکریا, رسول, عنایتی شریعت پناهی, مهران, زارع, ناصر, آزادی, پژمان. (1394). 'القای تقسیمات اسپوروفیتی و تشکیل ساختارهای رویانی در کشت میکروسپور گوجه فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.)', فصلنامه علمی ـ پژوهشی زیست فناوری گیاهان زراعی, 5(10), pp. 17-29.
احمدی, بهزاد, اصغری ذکریا, رسول, عنایتی شریعت پناهی, مهران, زارع, ناصر, آزادی, پژمان. القای تقسیمات اسپوروفیتی و تشکیل ساختارهای رویانی در کشت میکروسپور گوجه فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.). فصلنامه علمی ـ پژوهشی زیست فناوری گیاهان زراعی, 1394; 5(10): 17-29.

القای تقسیمات اسپوروفیتی و تشکیل ساختارهای رویانی در کشت میکروسپور گوجه فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.)

مقاله 2، دوره 5، شماره 10، تابستان 1394، صفحه 17-29  XML اصل مقاله (384 K)
نوع مقاله: علمی پژوهشی
نویسندگان
بهزاد احمدی1؛ رسول اصغری ذکریا2؛ مهران عنایتی شریعت پناهی 3؛ ناصر زارع4؛ پژمان آزادی5
1دانش آموخته دکتری، گروه زراعت و اصلاح نباتات ، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل
2دانشیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل
3دانشیار و رئیس بخش کشت بافت پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی ایران (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (AREEO)
4استادیار گروه اصلاح نباتات، دانشگاه محقق اردبیلی
5استادیار پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی ایران (ABRII)، کرج
چکیده
در این تحقیق، اثر تیمار سرمایی (4 درجه سانتیگراد به مدت 1 الی 5 روز) در ترکیب با شوک گرمایی (30 درجه سانتیگراد به مدت 1 الی 10 روز) و همچنین اثر کلشی‌سین (25 الی 100 میلی‌گرم در لیتر به مدت 24 الی 72 ساعت) بر القای تقسیمات اسپوروفیتی و تشکیل جنین در میکروسپورهای کشت شده دو رقم هیبرید گوجه فرنگی (برلینا و پتوپراید) بررسی شد. ساختارهای منتج از کشت میکروسپور با بیشتر از 10 هسته تنها در رقم برلینا و در کشت‌هایی مشاهده گردید که به مدت 1 و 2 روز تحت تیمار سرمایی 4 درجه سانتیگراد و سپس به مدت 2 روز در دمای 30 درجه قرار گرفتند. همچنین تیمار سرمایی به مدت 1 یا 2 روز و سپس 2 روز دمای 30 درجه به طور موثری موجب تشکیل ساختارهای میکروسپوری10-9 هسته‌ای در هر دو رقم گردید. میکروسپورهای با بیشتر از 5 هسته در هیچکدام از کشت‌هایی که به مدت 10 روز تحت تیمار دمایی 30 درجه قرار گرفتند بودند مشاهده نگردید. در رقم برلینا، ساختارهای میکروسپوری10-9 هسته‌ای در تیمار 25 میلی-گرم در لیتر کلشی‌سین به مدت 48 ساعت رویت شدند در حالیکه در رقم پتوپراید، در هیچکدام از تیمارها میکروسپورهای با بیشتر از 8 هسته تشکیل نگردید. رویان‌های‌ کروی تنها در محیط کشت دو لایه و تیمار 4 درجه سانتیگراد به مدت 2 و 5 روز و سپس 2 روز دمای 30 درجه تشکیل شدند. در صورت انتخاب دوره مناسب پیش تیمار گرمایی و سرمایی می‌توان رویان‌زایی را در میکروسپورهای گوجه ‌فرنگی القا نمود.
کلیدواژه‌ها
تنش سرمایی؛ تنش گرمایی؛ کلشی‌سین؛ گوجه فرنگی؛ میکروسپور
موضوعات
کشت بافت و ریزازدیادی
عنوان مقاله [English]
Induction of sporophytical divisions and formation of embryo structures in microspore culture of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.)
نویسندگان [English]
Behzad Ahmadi1؛ Rasoul Asghari Zakaria2؛ Mehran Enayati Shariat Panahi3؛ Naser Zare4؛ Pejman Azadi5
1Ph.D. student, Faculty of Agronomy and Plant Breeding, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran.
2Associate Professor, Faculty of Plant Breeding, University of Mohaghegh Ardabili
3researcher and head of Tisue culture and Gene transformation Dep.ABRII, AREEO
4Assistant Professor, Faculty of Plant Breeding, University of Mohaghegh Ardabili
51- Assistant Professor, Agricultural Research Institute of Iran (ABRII), Karaj
چکیده [English]
In this study, the effect of cold treatment (4 °C for 1 to 5 days) in combination with heat shock (30 °C for 1 to 10 days) and also colchicine treatment (25 to 100 mg/l for 24 to 72 h) were assessed on induction of sporophytical divisions in isolated microspore culture in two hybrid tomato cultivars (‘Berlina’ and ‘Petoperide’). Microspore-derived structures with more than 10 nuclei were only observed in cv. ‘Berlina’ and in the cultures incubated for 1 or 2 days at 4 °C and then for 2 days at 30 °C. In addition, cold treatment for 1 or 2 days and then 2 days at 30 °C could efficiently induce formation of microspore-derived structures with 9-10 nuclei in both cultivars tested. No microspore with more than 5 nuclei was observed in the cultures treated at 30°C for 10 days. In the cv. ‘Berlina’, microspore-derived structures with 9-10 nuclei were detected when 25 mg/l colchicine was used for 48 h, while in cv. ‘Petoperide’, microspore-derived structures with more than 8 nuclei were not observed in all treatments tested. Globular embryos were only produced in two-layered culture medium when treated at 4°C for 2 and 5 days and then subjected to 30°C for 2 days. Microspore embryogenesis could be induced in tomato if appropriate duration of cold and heat treatment was selected.
کلیدواژه‌ها [English]
Cold stress, Heat stress, Colchicine, tomato, Microspore
مراجع
Afroz A, Chaudhry Z, Rashid U, Rashid Khan M, Muhammed Ali G )2010( Enhanced regeneration in explants of tomato (Lycopersicon esculentum L.) with the treatment of coconut water. African J. Biotech. 24(9): 3634-3644.

Babbar SB, Agarwal PK, Sahay S, Bhojwani SS (2004) Isolated microspore culture of Brassica: an experimental tool for developmental studies and crop improvement. Indian J. Biotech. 3: 185-202.

Bal U, Abak K (2007) Induction of symmetrical nucleus division and multicellular structures from the isolated microspores of Lycopersicon esculentum Mill. Biotech. Biotech. Equip. 19(1): 35-42.

Bal U, Abak K (2007) Haploidy in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.): a critical review. Euphytica 158: 1-9.

Bal U, Shariatpanahi ME, Castro AJ, Emery D, Clement C, Dehestani-Ardakani M, Mozaffari K, Touraev A (2012) Pseudo-embryogenic structures in anther and isolated microspore cultures in vitro: a cautionary guide. Czech J. Genet. Plant Breed. 48(2): 51-60.

Corral-Martínez P, Nuez F, Seguí-Simarro JM (2010) Genetic, quantitative and microscopic evidence for fusion of haploid nuclei and growth of somatic calli in cultured ms1035 tomato anthers. Euphytica. 178: 215-228.

Ferrie AMR, Caswell KL (2011) Isolated microspore culture techniques and recent progressfor haploid and doubled haploid plant production. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 104: 301-309.

Gamborg OL, Miller RA, Ojima L (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res. 50:151-158.

Herrera JC, Moreno LG, Acuna JR, Pena MD, Osorio D (2002) Colchicine-induced microspore embryogenesis in coffee. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 71(1): 89-92.

Lichter R (1982) Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus. Z. Pflanzenphysiol. 105: 427-434.

Motallebi-Azar A, Khosrowshahli M, Valizadeh M, Masiha S, Moini A, Sharabianlou Z (2004) Combination ability and heritability of callogenesis and shoot regeneration from cultured anthers of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Iran J. Agri. Sci. 36(5): 1113-1122.

Motallebi-Azar A, Panahandeh J (2010) Effects of colchicine and cold duration pretreatments on androgenesis responses of tomato (Lycopersicon esculentum Mill) via anther culture. Russ. Agri. Sci. 36(5): 338-341.

Peng M, Wolyn DJ (1999) Improved callus formation and plant regeneration for shed microspore culture in asparagus (Asparagus officinalis L.). Plant Cell Rep. 18(1): 954-958.

Sabehat A, Lurie S, Weiss D (1998) Expression of small heat shock proteins at low temperatures. Plant Physiol. 117(2): 651-658.

Seguí-Simarro JM, Testillano PS, Jouannic S, Henry Y, Risueno MC (2005) Mitogen-activated protein kinases are developmentally regulated during stress-induced microspore embryogenesis in Brassica napus L. Histochem. Cell Biol. 123: 541-551.

Seguí-Simarro JM, Nuez F (2007) Embryogenesis induction, callogenesis, and plant regeneration by in vitro culture of tomato isolated microspores and whole anthers. J. Exp. Bot. 58(5): 1119-1132.

Seguí-Simarro JM, Corral-Martínez P, Parra-Vega V, González-García B (2011) Androgenesis in recalcitrant Solanaceous crops. Plant Cell Rep. 30(5): 765-778.

Shariatpanahi ME, Bal U, Heberle-Bors E, Touraev A (2006) Stresses applied for the re-programming of plant microspores towards in vitro embryogenesis. Physiol. Plant. 127(4): 519-534.

Shariatpanahi ME, Touraev A, Heberle-Bors E (2007) Induction of embryogenesis in microspores of tomato (Lycoporsicum esculontum Mill) cv. Microtom. Seed Plant Improv. J. 25(3): 317-330.

Shumilina DV, Shmykova NA, Bondareva LL, Suprunova TP (2015) Effect of genotype and medium culture content on microspore-derived embryo formation in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. chinensis ) cv. Lastochka. Biol. Bull. 42(4): 302-309.

Simmonds DH, Keller WA (1999) Significance of preprophase bands of microtubules in the induction of microspore embryogenesis in Brassica napus. Planta. 208: 383-391.

Supena EDJ, Custers JBM (2011) Refinement of shed-microspore culture protocol to increase normal embryos production in hot pepper (Capsicum annuum L.). Sci. Hort. 130(4): 769-774.

Tay D (2002) Vegetable Hybrid Seed Production.pp: 128-139. In Proceedings International Seed Seminar: Trade, Production and Technology. McDonald M and Contreras S (eds). Pontificia Universidad Católica de Chile, Facultad de Agronomía e IngenieríaForestal, Departamento de CienciasVegetales. October, 15th and 16th, 2002. Santiago - Chile.

Touraev A, Ilham A, Vicente O, Heberle-Bors E (1996a) Stress induced microspore embryogenesis from tobacco microspores: an optimized system for molecular studies. Plant Cell Rep. 15: 561-565.

Touraev A, Indrianto A, Wratschko I, Vicente O, Heberle-Bors E (1996b) Efficient microspore embryogenesis in wheat (Triticuma estivum L.) induced by starvation at high temperature. Plant Reprod. 9(4): 209-215.

Touraev A, Pfosser M, Heberle-Bors E (2001) The microspore: a haploid multipurpose cell. Adv. Bot. Res. 35: 53-109.

Varghese TM, Yadav G (1986) Production of embryoids and calli from isolated microspores of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) in liquid media. Biol. Plant. 28(2): 126-129.

Vergne P, Delvallee I, Dumas C (1987) Rapid assessment of microspore and pollen development stage in wheat and maize using DAPI and membrane permealization. Stain. Technol. 62: 299-304.

Wijnker E, van Dun K, de Snoo CB, Lelivelt CLC, Keurentjes JJB, Naharudin NS, Ravi M, Chan SWL, de Jong H, Dirks R (2012) Reverse breeding in Arabidopsis thaliana generates homozygous parental lines from a heterozygous plant. Nature Genet. 44:467-470.

Würschum T, Tucker MR, Reif JC, Maurer HP (2012) Improved efficiency of doubled haploid generation in hexaploid triticale by in vitro chromosome doubling. BMC Plant Biol. 12:109.

Zagorska NA, Shtereva A, Dimitrov BD, Kruleva MM (1998) Induced androgenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.)I. Influence of genotype on androgenetic ability. Plant Cell. Rep. 17: 968-973.

Zagorska NA, Shtereva LA, Kruleva MM, Sotirova VG, Baralieva DL, Dimitrov BD (2004) Induced androgenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). III. Characterization of the regenerants. Plant Cell Rep. 22: 449-456.

Zamani I, Gouli-Vavdinoudi E, Kovacs G, Xynias I, Roupakias D, Barnabas B (2003) Effect of parental genotypes and colchicine treatment on the androgenic response of wheat F1 hybrids. Plant Breed. 122(4): 314-317.

Zhao JP, Simmonds DH, Newcomb W (1996) Induction of embryogenesis with colchicine instead of heat in microspores of Brassica napus L. cv. Topas. Planta 198: 433-439.

Zhao JP, Newcomb W, Simmonds D (2003) Heat-Shock proteins 70 kDa and 19 kDa are not required for induction of embryogenesis of Brassica napus L. cv. Topas microspores. Plant Cell Physiol. 44(12): 1417-1421.

Zheng MY (2003) Microspore culture in wheat (Triticum aestivum)-doubled haploid production via induced embryogenesis. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 73: 213-230.

Zoriniants S, Tashpulatov AS, Heberle-Bors E, Touraev A (2005) The role of stress in the induction of haploid microspore embryogenesis. In: Palmer CE, Keller WA, Kasha KJ (eds) Biotechnology in Agriculture and Forestry. 56: 35-52.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,456
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,172
صفحه اصلی | واژه نامه اختصاصی | اخبار و اعلانات | اهداف و چشم انداز | نقشه سایت
ابتدای صفحه ابتدای صفحه

مجوز کریتیو کامنز
این کار مجوز دارد تحت مجوز کریتیو کامنز تخصیص 4.0 بین‌المللی.

Journal Management System. Designed by sinaweb.