علمی پژوهشی
ژنتیک مولکولی و مهندسی ژنتیک
علی سعیدپور؛ سدابه جهانبخش؛ تهمینه لهرلسبی؛ کسری اصفهانی؛ علی هاتف سلمانیان؛ خدیجه رضوی
چکیده
ناقلین دوتایی مرسوم مبتنی بر pBI121 که هنوز به طور گستردهای در انتقال ژن به گیاه بهوسیله آگروباکتریوم استفاده میشوند، بهعلت عدم کارآیی گزینشگر کانامایسین، در برخی از گیاهان تکلپهای قابل استفاده نیستند در حالی که مقاومت به هیگرومایسین یک نشانگر گزینشی پرکاربرد و مهم در تراریختی برخی گیاهان بهویژه تکلپهایها ...
بیشتر
ناقلین دوتایی مرسوم مبتنی بر pBI121 که هنوز به طور گستردهای در انتقال ژن به گیاه بهوسیله آگروباکتریوم استفاده میشوند، بهعلت عدم کارآیی گزینشگر کانامایسین، در برخی از گیاهان تکلپهای قابل استفاده نیستند در حالی که مقاومت به هیگرومایسین یک نشانگر گزینشی پرکاربرد و مهم در تراریختی برخی گیاهان بهویژه تکلپهایها به شمار میرود. از این رو در مطالعه حاضر، بهبود ناقل pBI121 برای تراریختی گیاهان تکلپهای مورد نظر قرار گرفت. به این منظور، ژن مقاومت به هیگرومایسین به همراه خاتمهدهنده 35S از پلاسمید p6-ubi-rnai بهوسیله آنزیمهای برشی SmaІ و NotІ، جداسازی و در ناقل حدواسط pBlueScript همسانهسازی شد. در ادامه، با استفاده از آنزیمهای HindIII و SmaI، پیشبر CaMV 35S از بدنه حامل pBI121 جداسازی و در بالادست این ژن در ناقل pBlueScript قرار داده شد. با استفاده از آنزیمهای HindIII و Eco53KI، کاست کامل ژن مقاومت به هیگرومایسین جایگزین کاست ژن مقاومت به کانامایسین (که با استفاده از آنزیمهای HindIII و MssI حذف شده بود) در ناقل pBI121 شد. صحت ساخت ناقل جدید توسط روش PCR، بررسی الگوی هضم آنزیمی و توالییابی تأیید شد. با توجه به محبوبیت سری ناقلین مبتنی بر pBI121 نسبت به سایر ناقلین موجود و آشنایی محققین با نحوه دستورزی آنها، کارایی ناقل معرفی شده در این مطالعه میتواند در پژوهشهای انتقال ژن به گیاهان تکلپه مورد بررسی قرار گیرد.
علمی پژوهشی
بیوتکنولوژی گیاهان دارویی
مهناز عربی باف؛ نادعلی بابائیان؛ نادعلی باقری
چکیده
شنبلیله با نام علمی Trigonella foenum– graecum گیاهی یکساله و دو لپهای از تیره بقولات است. ریشه، برگ و بذر آن دارای ترکیبات دارویی مهمی میباشد. دستورزی محیطهای کشت سلولی با الیسیتورها یکی از راهکارهای مهم جهت القای متابولیسم ثانویه و تولید متابولیتهای ارزشمند میباشد. سالیسیلیک اسید به عنوان یک الیسیتور غیرزیستی در افزایش تولید متابولیتهای ...
بیشتر
شنبلیله با نام علمی Trigonella foenum– graecum گیاهی یکساله و دو لپهای از تیره بقولات است. ریشه، برگ و بذر آن دارای ترکیبات دارویی مهمی میباشد. دستورزی محیطهای کشت سلولی با الیسیتورها یکی از راهکارهای مهم جهت القای متابولیسم ثانویه و تولید متابولیتهای ارزشمند میباشد. سالیسیلیک اسید به عنوان یک الیسیتور غیرزیستی در افزایش تولید متابولیتهای دارویی مؤثر است. هدف از این پژوهش بررسی اثر سالیسیلیک اسید بر رشد، برخی از شاخصهای فیزیولوژیک و تولید تریگونلین در کشت درون شیشه ای شنبلیله است. کشت سلولی شنبلیله با استفاده از کوتیلدون ژنوتیپ TN-47-155 شنبلیله در محیط جامد MS حاوی 35/0 میلیگرم در لیتر TDZ و 05/0 میلیگرم در لیتر IBA حاصل شد. واکنش سلولها در ارتباط با تولید تریگونلین و دیگر شاخصهای فیزیولوژیک پس از گذشت یک هفته با اعمال سالیسیلیکاسید با غلظتهای 5/12، 25، 50 میلیگرم بر لیتر مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج حاصل از HPLC نشان داد که رشد سلولی و زندهمانی سلولها تحت اثر تیمارها نسبت به شاهد کاهش یافته است. مقدار پراکسید هیدروژن و پراکسیداسیون لیپیدهای غشایی در سلولها نسبت به شاهد تحت اثر تیمارها افزایش یافت. کلیه تیمارها باعث افزایش تولید تریگونلین و فنل کل شدند. تیمار سلولها با غلظت 50 میلیگرم بر لیتر (75 درصد) سالیسیلیک اسید باعث افزایش میزان تریگونلین به میزان دو برابر شاهد (35 درصد) شد. سالیسیلیک اسید می-تواند به عنوان محرک در کشت سلولی شنبلیله به کار رود و باعث القای تولید بیشتر تریگونلین شود.
علمی پژوهشی
اصلاح نباتات مولکولی
پروین امانی داز؛ حسین حسینی مقدم؛ حسین صبوری؛ ابراهیم غلامعلی پور علمداری؛ سیده معصومه حسینی؛ سمیه سنچولی
چکیده
شناسایی نشانگرهای پیوسته به ژنهای کنترل کننده تحمل به خشکی از نیازهای اصلاح ارقام برنج با عملکرد زیاد در نواحی خشک میباشد. به منظور مکانیابی QTLهای کنترل کننده تحمل به تنش خشکی در برنج، 96 لاین نوترکیب F8 برنج حاصل از تلاقی اهلمیطارم و ندا در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار، تحت شرایط تنش خشکی در آزمایشگاه گیاهشناسی دانشکده ...
بیشتر
شناسایی نشانگرهای پیوسته به ژنهای کنترل کننده تحمل به خشکی از نیازهای اصلاح ارقام برنج با عملکرد زیاد در نواحی خشک میباشد. به منظور مکانیابی QTLهای کنترل کننده تحمل به تنش خشکی در برنج، 96 لاین نوترکیب F8 برنج حاصل از تلاقی اهلمیطارم و ندا در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار، تحت شرایط تنش خشکی در آزمایشگاه گیاهشناسی دانشکده کشاورزی دانشگاه گنبد کاووس در سال 1393 کشت شدند. نظر به وجود تنوع ژنتیکی بین لاینهای مورد مطالعه، امکان ردیابی QTLها در این بررسی فراهم شد. در محاسبه همبستگی صفات ارزیابی شده در شرایط تنش خشکی، بیشترین همبستگی مربوط به صفات قطر ریشه با چگالی سطح ریشه (**96/0) بود. نتایج تجزیه خوشهای براساس کل صفات در شرایط تنش خشکی، لاینهای مورد بررسی را در چهار گروه مقاوم، نیمه مقاوم، نیمه حساس و حساس به خشکی قرار داد. نقشه پیوستگی با استفاده از 30 نشانگر SSR و 20 نشانگر ISSR به دست آمد. طول نقشه پیوستگی 2/1413 سانتیمورگان با متوسط فاصله 18/12 سانتیمورگان بین دو نشانگر مجاور بود. در مجموع 13 فاصله واجد QTL برای صفات ارزیابی شده شناسایی شد که از این تعداد دو QTL طول ساقه، یک QTL تعداد ریشه، سه QTL عرض برگ، یک QTL وزن ساقه، سه QTL سطح برگ، یک QTL تراکم روزنه قبل تنش، یک QTL تراکم روزنه بعد تنش و یک QTL مجموع سطح روزنهها به سطح کل بعد تنش را کنترل نمود. از بین QTLهای ردیابی شده، qLL-2 و qSA-12 به ترتیب برای سطح برگ و تراکم روزنه بعد از تنش توانستند درصد بالایی از تغییرات فنوتیپی را توجیه نمایند. از نتایج این پژوهش بعد از تعیین اعتبار میتوان در برنامههای انتخاب به کمک نشانگر استفاده نمود.
علمی پژوهشی
بیوانفورماتیک
ناصر محمدیان روشن
چکیده
در گیاهان عالی، ساکارز سینتاز (SuS, EC 2.4.1.13) بهعنوان آنزیم کلیدی در متابولیسم ساکارز شناخته میشود. این آنزیم صورت برگشت پذیر و در حضور یوریدین دیفسفات (UDP)، ساکارز را به فروکتوز و UDP-گلوکز تبدیل میکند. در این مطالعه 22 ژن ساکارز سینتاز با استفاده از روشهای بیوانفورماتیکی در ژنوم گندم شناسایی شد که براساس جایگاه کروموزومی از TaSUS1 تا ...
بیشتر
در گیاهان عالی، ساکارز سینتاز (SuS, EC 2.4.1.13) بهعنوان آنزیم کلیدی در متابولیسم ساکارز شناخته میشود. این آنزیم صورت برگشت پذیر و در حضور یوریدین دیفسفات (UDP)، ساکارز را به فروکتوز و UDP-گلوکز تبدیل میکند. در این مطالعه 22 ژن ساکارز سینتاز با استفاده از روشهای بیوانفورماتیکی در ژنوم گندم شناسایی شد که براساس جایگاه کروموزومی از TaSUS1 تا TaSUS22 نامگذاری شدند. آنالیز فیلوژنتیکی نشان داد که ژنهای ساکارز سینتاز گندم و سایر گیاهان از نظر تکاملی به سه گروه SUSI، SUSII و SUSIII تقسیم میشوند. ژنهای TaSUS هر گروه از نظر ویژگیهای ساختاری مانند تعداد، طول و توزیع اگزونها حفاظت شده هستند. ناحیه بالادست ژنهای TaSUS دارای فراوانی متفاوتی از عناصر تنظیمی cis است که دلیلی بر پیچیدگی تنظیم بیان این ژنها در مراحل نموی و یا پاسخ به تنشها میباشد. همچنین 21 ژن TaSUS هدف miRNA مربوط به 16 خانواده متفاوت قرار میگیرند که اهمیت تظیم بیان ژن پس از رونویسی در این خانواده را نشان میهد. پروفایل بیانی مکانی/زمانی این ژنها مشخص کرد که ژنهای TaSUS مربوط به زیرگروه SUSI نقش مهمی در رشد و نمو گندم بر عهده دارند. این نتایج نگاه جدیدی به تکامل ژنهای TaSUS بوده و اطلاعات پایه از نظر تکاملی و کارکردی احتمالی، برای انتخاب و ارزیابی نقش این ژنها در متابولیسم ساکارز در شرایط رشدی مختلف در گندم را فراهم میکند.
علمی پژوهشی
بیوتکنولوژی میکروبی در گیاهان زراعی
محمد ضرابیان؛ غلامعلی رنجبر؛ سید کمال کاظمی تبار؛ حمید نجفی زرینی
چکیده
همزیستی بین گیاه و باکتری با تشکیل گره و تثبیت نیتروژن بر کمیت محصول و همچنین محتوای پروتئین گیاه دارای اهمیت بسیار زیادی میباشد. در این پژوهش جهت شناسایی ژنهای باکتریایی مرتبط با تولید گره، تعداد 194 سویه باکتری Rizobium leguminosarum نیمه همزیست با گیاه لوتوس بورتیایی مورد استفاده قرار گرفت. صفات مرتبط با گرهزایی (تعداد گره سفید، تعداد ...
بیشتر
همزیستی بین گیاه و باکتری با تشکیل گره و تثبیت نیتروژن بر کمیت محصول و همچنین محتوای پروتئین گیاه دارای اهمیت بسیار زیادی میباشد. در این پژوهش جهت شناسایی ژنهای باکتریایی مرتبط با تولید گره، تعداد 194 سویه باکتری Rizobium leguminosarum نیمه همزیست با گیاه لوتوس بورتیایی مورد استفاده قرار گرفت. صفات مرتبط با گرهزایی (تعداد گره سفید، تعداد گره قرمز و تعداد کل گره) در 7، 14، 21 و 28 روز بعد از تلقیح اندازهگیری شد. نتایج حاصل از تجزیه به مولفههای اصلی، حاکی از تفکیک کامل بین سویهها با ژنومهایA ، C و D بود. علاوه بر آن، نتایج مطالعه سرتاسری ژنوم (GWAS) نشان داد که اپرون با فعالیت فاکتور ترشحی در القای مقاومت بر صفت گره قرمز موثر میباشد. یاد آور می شود که به دلیل برخورد بسیار مختصر با چکیده مقاله این چکیده مقاله از تعداد دویست کلمه مجاز در این قسمت بسیار بسیار کمتر شده است که به این وسیله برای رسانده به تعداد دویست کلمه در این قسمت این توضیحات را نوشته ام که بتوانم مجوز ورود به مرحله بعد را دریافت نمایم. از این که مجبور به ارائه توضیح در این قسمت شدم عذرخواه هستم و لذا شایسته است عذر نویسنده مسئول را با بزرگواری خود بپذیرید.
علمی پژوهشی
بیوتکنولوژی و تنش های زنده و غیرزنده
نرجس فتاحی؛ حمید سبحانیان؛ خدیجه رضوی؛ تهمینه لهراسبی؛ غلامرضا بخشی خانیکی
چکیده
تنشهای محیطی اثرات جبرانناپذیری بر تولید گندم نان (Triticum aestivum L.) که از مهمترین محصولات زراعی است میگذارند. از طرفی اعضا خانواده AP2/ERF از مهمترین تنظیمکنندگان رونویسی هستند که بر رشد و پاسخ گیاه به تنشهای زنده و غیرزنده موثرند. برای ارزیابی سازوکار تحمل تنش شوری در گندم فعالیت آنزیمهای سوپر اکسیددیسموتاز، آسکورباتپراکسیداز ...
بیشتر
تنشهای محیطی اثرات جبرانناپذیری بر تولید گندم نان (Triticum aestivum L.) که از مهمترین محصولات زراعی است میگذارند. از طرفی اعضا خانواده AP2/ERF از مهمترین تنظیمکنندگان رونویسی هستند که بر رشد و پاسخ گیاه به تنشهای زنده و غیرزنده موثرند. برای ارزیابی سازوکار تحمل تنش شوری در گندم فعالیت آنزیمهای سوپر اکسیددیسموتاز، آسکورباتپراکسیداز و کاتالاز در دو لندریس متحمل گندم (3623 و 3625) تحت شوری با آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی در دو سطح شاهد و 250 میلی مولار شوری در سه تکرار انجام شد. از گیاهچهها در زمانهای صفر، 1، 3، 6، 12 و 24 ساعت و 10 روز پس از تنش نمونهبرداری شد. فعالیت آنزیمها در ریشه و اندام هوایی گیاهان اندازهگیری شد. توالی نوکلئوتیدیAP2-21 از پایگاه NCBI استخراج و آغازگرها طراحی و قطعه ژن از گندم جدا، همسانه-سازی و توالییابی و با حضور دومین حفاظت شده AP2 تأیید شد. تغییرات بیان TaAP2-21 با روش PCR کمی و با استفاده از آغازگرهای ویژه و ژن بتا اکتین بررسی شد. نتایج نشاندهنده اختلاف معنیدار فعالیت آنزیمها در زمانهای مختلف نسبت به شاهد در هر دو بافت هر دو رقم بود و بیشترین تفاوت در تنشهای کوتاه و میانمدت مشاهده شد با اینحال ظاهرا" در تنش بلندمدت سازوکار آنتیاکسیدانی آنزیمها در 3623 فعالتر از 3625 عمل می کنند. بیان ژن تحت شوری در بافتهای هر دو لندریس کاهش معنیداری داشت. احتمالا ژن TaAP2-21 یکی از عوامل بازدارنده رونویسی از ژنهای پاسخدهنده به شوری بوده و باعث ایجاد حساسیت به شوری در گندم میشود.